1.2探究培养液中酵母菌种群数量的变化导学案-2024-2025学年高二上学期生物人教版(2019)选择性必修2

2024-11-20
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探究实践 培养液中酵母菌种群数量的变化 一、实验原理 1、用液体培养基培养酵母菌,种群的增长受培养液的成分、空间、pH、温度等因素的影响。 2、在理想的环境中,酵母菌种群的增长呈___J形_____;在有限的环境中,酵母菌种群的增长呈__S形_____。 3、计算酵母菌数量可用抽样检测的方法。 4、血细胞计数板的结构及计数规则 (1)结构:血细胞计数板常用来统计细胞、细菌等的数量。血细胞计数板如图所示: 计数室通常有两种规格: (2)计算公式: ①如果是25中格×16小格的计数板,除了计数其4个对角方位的中格内的酵母菌数外,还需再计数中央的一个中格(共5×16=80个小格)内的酵母菌,则计算公式为:酵母菌数/mL=(5个中格内酵母菌数÷80)×400×104×稀释倍数。 ②如果是16中格×25小格的计数板,要计数4个对角方位的中格(共4×25=100个小格)内的酵母菌,则计算公式为:酵母菌数/mL=(4个中格内酵母菌数÷100)×400×104×稀释倍数。 二、材料用具 酵母菌、无菌马铃薯培养液或肉汤培养液、试管、吸管、血细胞计数板、显微镜 三、实验步骤 四、实验结果与分析 1、酵母菌增长曲线图: (2)趋势:先增加再减少。 (3)分析 ①增长:在开始时培养液的营养充足,空间充裕,条件适宜,因此酵母菌大量繁殖,出生率高于死亡率,种群数量剧增。 ②稳定和波动:随着酵母菌数量的不断增多,营养消耗、pH变化、有害产物积累等,酵母菌死亡率逐渐升高,当死亡率等于出生率时,种群数量不再增长。 ③曲线下降的原因:营养物质随着消耗逐渐减少,有害产物逐渐积累,培养液的PH等理化性质发生改变。 五、注意事项 1、从试管中吸出培养液进行计数之前,建议你将试管轻轻振荡几次。这是为什么? 目的是使培养液中的酵母菌均匀分布,减小误差。 2、制片时,先将盖玻片放在血细胞计数板的计数室上,用吸管吸取培养液,滴于盖玻片边缘,让培养液自行渗入。多余的培养液用滤纸吸去。一般用显微镜观察时,是先滴后盖。 如果先加培养液再盖盖玻片,对计数结果有什么影响? 提示:盖玻片可能由于已加入液滴的表面张力而不能严密地盖到计数板表面,使计数室内部液体增多,计数结果偏高。此外,不能避免计数室内产生气泡,使计数室体积减小而造成误差。 3、制好玻片后,应稍待片刻,待酵母菌全部沉降到计数室底部,再用显微镜进行观察、计数。为什么? 提示:如果酵母菌未能全部沉降到计数室底部,通过显微镜观察时可能出现以下现象:要么能看清酵母菌但看不清血细胞计数板网格线,要么能看清血细胞计数板网格线但看不清酵母菌,不利于计数。 4、如果一个小方格内酵母菌过多,难以数清,应当采取什么措施? 应先稀释后计数,最后计算时乘以稀释倍数。 5、对于压在小方格界线上的酵母菌,应当怎样计数? 计上不计下,计左不计右。 6、本探究需要设置对照组吗?本实验中存在对照吗? 不需要设置对照,在时间上形成前后自身对照。 7、本实验需要重复实验吗? 需要重复,减小实验误差。 8、血细胞计数板的清洗方法? 正确方法是浸泡和冲洗,不能用试管刷洗刷。 六、结果异常的原因 a.统计结果偏小的原因:取液时未摇匀,从试管上部吸取的培养液中酵母菌偏少;在计数时,未统计边线及夹角的酵母菌等。 b.统计结果偏大的原因:取液时未摇匀,从试管下部吸取的培养液中酵母菌偏多;在计数时统计了四周边线的酵母菌等。 学科网(北京)股份有限公司 $$ 探究实践 培养液中酵母菌种群数量的变化 一、实验原理 1、用液体培养基培养酵母菌,种群的增长受培养液的 等因素的影响。 2、在理想的环境中,酵母菌种群的增长呈_ ;在有限的环境中,酵母菌种群的增长呈_ 。 3、计算酵母菌数量可用 的方法。 4、血细胞计数板的结构及计数规则 (1)结构:血细胞计数板常用来统计细胞、细菌等的数量。血细胞计数板如图所示: 计数室通常有两种规格: (2)计算公式: ①如果是25中格×16小格的计数板,除了计数其4个对角方位的中格内的酵母菌数外,还需再计数中央的一个中格(共5×16=80个小格)内的酵母菌,则计算公式为: ②如果是16中格×25小格的计数板,要计数4个对角方位的中格(共4×25=100个小格)内的酵母菌,则计算公式为: 二、材料用具 酵母菌、无菌马铃薯培养液或肉汤培养液、试管、吸管、 三、实验步骤 四、实验结果与分析 1、酵母菌增长曲线图: (2)趋势:先增加再减少。 (3)分析 ①增长:在开始时培养液的营养充足,空间充裕,条件适宜,因此酵母菌大量繁殖,出生率高于死亡率,种群数量剧增。 ②稳定和波动:随着酵母菌数量的不断增多,营养消耗、pH变化、有害产物积累等,酵母菌死亡率逐渐升高,当死亡率等于出生率时,种群数量不再增长。 ③曲线下降的原因: 五、注意事项 1、从试管中吸出培养液进行计数之前,建议你将试管轻轻振荡几次。这是为什么? 2、制片时,先将盖玻片放在血细胞计数板的计数室上,用吸管吸取培养液,滴于盖玻片边缘,让培养液自行渗入。多余的培养液用滤纸吸去。一般用显微镜观察时,是 如果先加培养液再盖盖玻片,对计数结果有什么影响? 提示:盖玻片可能由于已加入液滴的表面张力而不能严密地盖到计数板表面,使计数室内部液体增多,计数结果偏高。此外,不能避免计数室内产生气泡,使计数室体积减小而造成误差。 3、制好玻片后,应稍待片刻,待酵母菌全部沉降到计数室底部,再用显微镜进行观察、计数。为什么? 提示:如果酵母菌未能全部沉降到计数室底部,通过显微镜观察时可能出现以下现象:要么能看清酵母菌但看不清血细胞计数板网格线,要么能看清血细胞计数板网格线但看不清酵母菌,不利于计数。 4、如果一个小方格内酵母菌过多,难以数清,应当采取什么措施? 5、对于压在小方格界线上的酵母菌,应当怎样计数? 6、本探究需要设置对照组吗?本实验中存在对照吗? 7、本实验需要重复实验吗? 8、血细胞计数板的清洗方法? 六、结果异常的原因 a.统计结果偏小的原因:取液时未摇匀,从 吸取的培养液中酵母菌偏少;在计数时,未统计边线及夹角的酵母菌等。 b.统计结果偏大的原因:取液时未摇匀,从 吸取的培养液中酵母菌偏多;在计数时统计了四周边线的酵母菌等。 学科网(北京)股份有限公司 $$

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